壳聚糖-薰衣草精油复合膜的制备与表征(5)
(4)溶胀性测定
取约0.4g膜样品，称重(W2)，再将膜完全浸泡在30ml去离子水中，24 h后取出，用滤纸吸干表面多余的水，称重(W1)。溶胀指数由以下公式计算：
溶胀指数= (W1 − W2)/ W2
单位为gH2O/g,所有测试重复三次，取平均值。
式中：W1代表湿态壳聚糖膜表面用滤纸吸干重量(g)；
W2代表干态壳聚糖膜重量(g)
2.3.4 壳聚糖膜力学性能的测定
测定方法是根据GB1040-79，测定的力学性质为(1)抗张强度，(2)延伸率，以膜在破裂点的百分伸长率表示。
试样预处理：
a．选取平整、洁净、无缺陷的薄膜，将其裁成 160 mm×10mm 的横条,
b．测厚度,每个试样在标距内测量三点,取其平均值,作为膜的厚度,
c．将试样置于相对湿度为65%±5%的干燥器中,放置在25℃温度条件下,不少于4 h。
拉伸强度按下式计算：δ=P/b . d
式中：P- 最大载荷（kg）；b - 试样宽度（mm）；d- 试样厚度（mm ）。
延伸率按下式计算：E=（G-G0）/ G0
式中： G0：试样原始标线间的距离 (mm)； G：试样断裂时标线间的距离 (mm)。
2.3.5红外光谱测定
壳聚糖粉末、精油、壳聚糖单一膜（未中和），壳聚糖单一膜、壳聚糖精油复合膜的红外光谱图由傅里叶变换红外光谱仪（Vertex 70，德国布鲁克公司），在衰减全反射模式下测试，扫描次数32，扫描范围600 to 4000 cm-1，分辨率4 cm-1。
2.3.6X射线测定
壳聚糖粉末、壳聚糖膜（未中和）、壳聚糖膜、壳聚糖薰衣草精油共混膜的XRD的图像用X射线衍射仪（D2 PHASER，德国布鲁克公司）测得。并用Jade6.5软件分析数据。
计算结晶度的公式如下：
结晶度=衍射峰面积/总峰面积
测试条件: Cu Kα(λ = 1.54 Ǻ)灯，测试电压40 kV ，测试电流40 mA.扫描速率4°min-1，扫描范围2θ=10-60°。
2.3.7抑菌性实验
将营养琼脂溶于蒸馏水，配制成液体培养基，用NaOH 溶液调节pH 值至7． 0 左右。培养基经121 ℃高温灭菌后备用，将复合膜制成直径为14 mm 的圆形样品，紫外灭菌30 min 备用。将营养琼脂进行到平板，对40个培养皿进行编号，至冷却凝固。将试管培养的大肠杆菌种加入5毫升无菌水，用接种环将其溶在无菌水中，用移液管移取1毫升倒入1号试管中，加入9毫升无菌水，待其混合均匀后，从2号试管移取1毫升倒入3号试管中，然后加入9毫升无菌水，以此类推到6号试管。用2号试管中的大肠杆菌菌种进行用0.1毫升的移液管各移取0.1毫升到1-14号培养皿中，用接种环进行涂布，然后将准备好的壳聚糖单一膜和壳聚糖-薰衣草精油复合膜的样品放到培养皿中，其中1号样品为不加氢氧化钾中和的壳聚糖单一膜，2号为加氢氧化钾中和的壳聚糖单一膜，2-5号样品为精油量为壳聚糖量的2%，4%，6%，8%，10%，每个膜样品分别放入到两个培养皿中，为1-14号培养皿，另外15与16号培养皿只用4号试管中的大肠杆菌移取0.1毫升，只进行涂，不加入样品。同样17与18号培养皿用5号试管中的大肠杆菌涂布，19与20号培养皿用6号试管中的大肠杆菌进行涂布。15-20号培养皿中用作计数菌种，进行抗菌性分析。最后，将上述20个培养皿放到37摄氏度的生化培养箱中，培养24小时之后，将其取出，放在紫外灯下将其杀死，然后观察聚糖单一膜和壳聚糖-薰衣草精油复合膜的抗菌性，分析抗菌性强弱因素。[14]